食物中維生素B2(核黃素)的測(cè)定方法
發(fā)布于 2011/12/05閱讀(1300)來源 zxj標(biāo)簽 熒光光度計(jì)
摘要
食物中維生素B2(核黃素)的測(cè)定方法
內(nèi)容
硅鎂吸附劑凈化熒光法
1. 原理
核黃素在440~500nm波長光照射下發(fā)生黃綠色熒光。在稀溶液中其熒光強(qiáng)度與核黃素的濃度成正比。利用硅鎂吸附劑對(duì)核黃素的吸附作用去除樣品中的干擾熒光測(cè)定的雜質(zhì),然后洗脫核黃素,測(cè)定其熒光強(qiáng)度。試液再加入低亞硫酸鈉(Na2S2O4),將核黃素還原為無熒光的物質(zhì),再測(cè)定試液中殘余熒光雜質(zhì)的熒光強(qiáng)度,兩者之差即為食品中核黃素所產(chǎn)生的熒光強(qiáng)度。
2.方法來源
參照GB12391-1990 本方法適用于食物及飼料中核黃素的測(cè)定。
3. 儀器
1) 高壓消毒鍋
2) 電熱恒溫培養(yǎng)箱
3) 核黃素吸附柱
4) 熒光分光光度計(jì)。
4. 試劑
試驗(yàn)用水為蒸餾水。試劑不加說明者為分析純。
4.1 硅鎂吸附劑:60~100目,sigma 公司產(chǎn)品。
4.2 2.5mol/L無水乙酸鈉溶液。
4.3 10%木瓜蛋白酶:用2.5mol/L乙酸鈉溶液配制。使用時(shí)現(xiàn)配制。
4.4 10%淀粉酶:用2.5mol/L乙酸鈉溶液配制。使用時(shí)現(xiàn)配制。
4.5 0.1 mol/L鹽酸
4.6 1 mol/L氫氧化鈉
4.7 0.1 mol/L氫氧化鈉
4.8 20%(w/v)低亞硫酸鈉溶液:此液用時(shí)現(xiàn)配。
4.9 洗脫液:丙酮+冰醋酸+水(5+2+9)
4.10 0.04%溴甲酚綠指示劑
4.11 3%(v/v)高錳酸鉀溶液:
4.12 3%(v/v)過氧化氫溶液:
4.13 核黃素標(biāo)準(zhǔn)液的配制:(純度>98%sigma公司)。
A) 核黃素標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液:(25μg/mL)將標(biāo)準(zhǔn)品核黃素粉狀結(jié)晶置于真空干燥器或盛有硫酸的干燥器中。經(jīng)過24小時(shí)后,準(zhǔn)確稱取50mg,置于2L容量瓶中,加入2.4mL冰乙酸和1.5mL水。將容量瓶置于溫水中搖動(dòng),待其溶解,冷卻至室溫,稀釋至2L,移至棕色瓶中,加少許甲苯復(fù)蓋于溶液表面,于冰箱中保存。
B) 核黃素標(biāo)準(zhǔn)使用液:吸取2.00mL核黃素標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液,置于50ml棕色容量瓶中,用水稀釋至刻度。避光,貯于4℃冰箱,可保存一周。此溶液每毫升相當(dāng)于1.00μg核黃素。
5.操作步驟
整個(gè)操作過程需避光進(jìn)行。
5.1 樣品提取
1) 水解:稱取2~10g樣品(約含10~200μg 核黃素)于100ml三角瓶中,50mL0.1mol/L鹽酸,攪拌直到顆粒物分散均勻。用40ml瓷坩堝為蓋扣住瓶口,于121℃高壓水解樣品30min。水解液冷卻后,滴加1mol/L氫氧化鈉,用0.04%溴甲酚綠作外指示劑調(diào)至pH為4.5。
2) 酶解
A) 含有淀粉的水解液:加入3ml10%淀粉酶溶液,于37~40℃保溫約16h。
B) 含高蛋白的水解液:加3ml10%木瓜蛋白酶溶液,于37~40℃約16h。
5.2 過濾:上述酶解液定容至100.0ml,用干濾紙過濾。此提取液在4℃冰箱中可保存一周。
5.3 氧化去雜質(zhì):視樣品中核黃素的含量取一定體積的樣品提取液及核黃素標(biāo)準(zhǔn)使用液(約含1~10μg核黃素)分別于20ml的帶蓋刻度試管中,加水至15ml。各管加0.5ml冰乙酸,混勻。加3%高錳酸鉀溶液0.5ml,混勻,放置2min,使氧化去雜質(zhì)。滴加3%雙氧水溶液數(shù)滴,直至高錳酸鉀的顏色褪掉。劇烈振搖此管,使多余的氧氣逸出。
5.4 核黃素的吸附和洗脫
A) 核黃素吸附柱:硅鎂吸附劑約1g用濕法裝入柱,占柱長1/2~2/3(約5cm)為宜(吸附柱下端用一團(tuán)脫脂棉墊上),勿使柱內(nèi)產(chǎn)生氣泡,調(diào)節(jié)流速約為60滴/min。
B) 過柱與洗脫:將全部氧化后的樣液及標(biāo)準(zhǔn)液通過吸附柱后,用約20ml熱水洗去樣液中的雜質(zhì)。然后用5.00ml洗脫液將樣品中核黃素洗脫并收集于一帶蓋10ml刻度試管中,再用水洗吸附柱,收集洗出之液體并定容至10ml,混勻后待測(cè)熒光。
6 . 測(cè)定
A) 于激發(fā)光波長440nm,發(fā)射光波長525nm測(cè)量樣品管及標(biāo)準(zhǔn)管的熒光值。
B) 待樣品及標(biāo)準(zhǔn)的熒光值測(cè)量后,在各管的剩余液(約5~7ml)中加0.1ml20%低亞硫酸鈉溶液,立即混勻,在20s內(nèi)測(cè)出各管的熒光值,作為各自的空白值。
7. 計(jì)算
(A-B)×S 100
X = × f ×---
(C-D)×m 1000
式中: X--樣品中含核黃素的量,mg/100g;
A --樣品管熒光值;
B --樣品管空白熒光值;
C --標(biāo)準(zhǔn)管熒光值;
D --標(biāo)準(zhǔn)管空白熒光值;
f --稀釋倍數(shù);
m --樣品的質(zhì)量,g;
S --標(biāo)準(zhǔn)管中的核黃素含量,μg;
100
-- --將樣品中核黃素量由μg/g折算成mg/100g的折算系數(shù)。
1000
注:1. 標(biāo)準(zhǔn)曲線由0.01μg至20μg間,呈良好的線形關(guān)系,所以每次測(cè)定樣品的同時(shí),測(cè)定與樣品含量相近的標(biāo)準(zhǔn)即可。
2.氧化去雜質(zhì),加入高錳酸鉀的量不宜過多,以避免加入雙氧水的量大,產(chǎn)生氣泡,影響核黃素的吸附及洗脫。
相關(guān)資料
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